Mechanismen, für krankheitsunterdrückung durch Wurmhumus

Wurmhumus unterdrückt die Krankheiten durch zwei Arten:

Systematische Pflanzenresistenz und gestärkte pflanzliche Immunantwort

Mikrobieller Wettbewerb, Antibiose und Hyperparasitismus

1. Hoitink HA, Grebus ME (1997) Composts and Control of Plant Diseases. In: Hayes MHB, Wilson WS (eds) Humic Substances Peats and Sludges Health and Environmental Aspects, Royal Society of Chemistry, Cambridge. pp 359-366

Die mikrobielle Unterdrückung von Krankheiten wirkt auf zwei Weisen:

"Allgemeine Unterdrückung", wobei eine Vielzahl von Mikroben die Krankheitserreger wie z.B Pythium und Phytophthora unterdrücken.

"Spezifische Unterdrückung", wo ein enger Bereich von Organismen die Krankheitsunterdrückung erleichtert, z.B.  Krankheit, die durch Rhizoctonia verursacht wird

1. Chen W, Hoitink HA, Schmitthenner AF, Touvinen O (1987) The role of microbial activity in suppression of damping off caused by Pythium ultimum. Phytopathology 78:314-322
2. Hoitink HA, Stone AG, Han DY (1997) Suppression of plant diseases by compost. Hort Sci 32:184-187

Die Unterdrückung von vielen Krankheiten ist rein biotisch und nicht chemisch gesteuert. Wurmhumus mit Bakterien hat z.B. Fusarium, die Welke der Tomate erfolgreich unterdrückt. Steriler Wurmhumus ohne Bakterien ist wirkungslos:

1. Szczech MM (1999) Suppressiveness of vermicomposts against fusarium wilt of tomato. J Phytopathology 147:155-161

Wirkungsgrad von Wurmhumus auf Unterdrückung von Krankheiten ist abhängig von Dosierung und Temperatur:

1. Rivera AMC, Wright ER, López MV, Fabrizio MC (2004) Temperature and dosage dependent suppression of damping-off caused by Rhizoctonia solani in vermicompost amended nurseries of white pumpkin. Phyton 53:131-136

Wurmhumus ist reich an Nährstoffen, Calcium humate und gelatinose Bindemittel, diese verhindern die Austrocknung und begünstigt die Vermehrung von nützlichen Mikroorganismen wie  Trichoderma spp, Pseudomonas spp und  Mykorrhiza-Sporen:

1. Lunt HA, Jacobson HGM (1944) The chemical composition of earthworm casts. Soil Sci 58:367-37
2. Parle JN (1963) A Microbiological Study of Earthworm Casts. J Gen Microbiol 31:13-2
3. Edwards CA (1998) The use of earthworms in the breakdown and management of organic wastes. In: Edwards CA (ed) Earthworm Ecology, CRC Press, Boca Raton. pp 327-354
4. Tiunov AV, Scheu S (2000) Microfungal communities in soil litter and casts of Lumbricus terrestris (Lumbricidae): a laboratory experiment. Appl Soil Ecol 14:17-26
5. Schmidt O, Doubre BM, Ryder MH, Killman K (1997) Population dynamics of Pseudomonas corrugata 2140R LUX8 in earthworm food and in earthworm cast. Soil Biol Biochem 29:523-52
6. Gange AC (1993) Translocation of mycorrhizal fungi by earthworms during early succession. Soil Biol Biochem 25:1021-1026
7. Doube BM, Ryder MH, Davoren CW, Meyer T (1995) Earthworms: a down under delivery system service for biocontrol agents of root disease. Acta Zool Fennica 196:219-223

 Wurmhumus hat eine erhöhte Population an Gemeinschaften von nützlichen gramnegativen Bakterien:

1. Clapperton MJ, Lee NO, Binet F, Conner RL (2001) Earthworms indirectly reduce the effect of take-all (Gaeumannomyces graminis var. tritici) on soft white spring wheat (Triticium aestivum cv. Fielder). Soil Biol Biochem 33:1531-1538
2. Elmer WH (2009) Influence of earthworm activity on soil microbes and soilborne diseases of vegetables. Plant Dis 93:175-179

In Wurmhumus vorhandene chitinolytische Bakteriengemeinschaften, wie Nocardioides oleivorans, mehrere Arten von Streptomyces und Staphylococcus epidermidis, haben eine fungizide Wirkung und hemmen Pflanzen-Phytopathogene wie R. solani, Colletotrichum coccodes Pythium ultimum P.capsici und Fusarium moniliforme:

Yasir M, Aslam Z, Kim SW, Lee SW, Jeon CO, Chung YR (2009) Bacterial community composition and chitinase gene diversity of vermicompost with antifungal activity. Bioresour Technol 100:4396-4403